La membrane cellulaire chez les végétaux. Thèse présentée au concours d'agrégation (Section d'histoire naturelle et de pharmacie).
Montpellier : impr. Gustave Firmin, Montane et Sicardi
Thèse de pharmacie de Paris (agrégation)
Université Paris Cité. BIU Santé Pharmacie
0001 - Page sans numérotation - [Couverture]
0005 - Page sans numérotation - [Page de faux-titre]
0007 - Page sans numérotation - [Page de titre]
0015 - Page sans numérotation - Introduction
0017 - Page 17 - La membrane cellulaire chez les végétaux. Première partie. Morphologie générale. Chapitre premier. Formation de la membrane
0018 - Page 18 - Ier. Formation de la membrane lors de la division nucléaire. A. Formation précoce. a) Formation simultanée
Fig. 1. Cellule mère pollinique de Lilium Martagon. Formation de la plaque cellulaire. Phase du tonnelet (Guignard)
Fig. 2. Cellule mère pollinique de Lilium Martagon. - Multiplication des fils connectifs (Strasburger) / Fig. 3. Cellule mère pollinique de Lilium Martagon. - Formation de la plaque cellulaire (Strasburger)
Fig. 4. Cellule mère pollinique de Lilium Martagon. - Division de la plaque cellulaire ; ébauche de la cloison de séparation (Strasburger)
0021 - Page 21 - b) Formation progressive
Fig. 5. Cellule du tégument de l'ovule en voie de croissance, dans Epipactis palustris
0022 - Page 22 - B. Formation tardive de la membrane
Fig. 6. Cellules mères polliniques de Neottia ovata. - I. Formation des noyaux tertiaires. - II. Les quatre noyaux adultes ; les filaments connectifs et les plaques cellulaires en contact avec la paroi cellulaire (Guignard)
0024 - Page 24 - II. Formation de la membrane en dehors de la division nucléaire
0026 - Page 26 - Chapitre II. Influence des agents extérieurs sur la formation et la direction de la membrane / Influences favorisantes
Fig. 7. Coupe transversale d'une plaie spontanée, sur la paroi des loges d'une pomme ; prolifération des cellules qui ont traversé la fissure, pour s'engager dans la cavité de la loge (Massart)
Fig. 8. Oeuf des Fucus vesiculosus sur le point de germer
Fig. 9. Anneau scléreux rompu, dans un entre-noeud de Pelargonium zonale
Fig. 10. Fragment d'une coupe à travers le deuxième anneau de l'année d'un petit tronc normal âgé de deux ans, d'Aesculus Hippocastanum
0036 - Page 36 - Chapitre III. Croissance de la membrane / I. Accroissement en surface
0039 - Page 39 - Bibliographie / II. Accroissement en épaisseur / Sratification de la membrane. Lamelles d'accroissement
0041 - Page 41 - La vraie nature des lamelles. - «La lamelle de jonction»
0043 - Page 43 - Les diverses couches de la membrane
Fig. 11. Un fragment de la paroi d'une cellule de la moelle d'une tige déjà assez âgée de Clematis Vitalba
Fig. 12. Une fibre lignifiée (Dippel) / Fig. 13. Fibre ligneuse examinée au microscope polarisant (Dippel)
0045 - Page 45 - Substance intercellulaire. - Lamelle moyenne
0047 - Page 47 - Couche secondaire / Couche tertiaire / Marche de l'épaississement à la surface de la membrane
Fig. 14. Hoya carnosa. Cellule pareachymateuse de l'écorce primaire de la tige (Baranetzki)
0052 - Page 52 - III. Rôle du noyau dans le développement de la membrane / A. Le noyau et la formation de la membrane
Fig. 15. Cellule d'un poil de Sicyos angulatus
Fig. 16. Elodea Canadensis. - Cellules montrant les filaments qui relient entre elles les sphères protoplasmiques séparées (Townsend)
Fig. 17. Rhizoïde de Marchantia polymorpha (Townsend) / Fig. 18. Extrémité libre d'un tube pollinique d'Hyacinthus orientalis (Townsend)
Fig. 19. Cellule d'un poil de Cucurbita Pepo (Townsend)
0057 - Page 57 - B. Le noyau et l'accroissement de la membrane
Fig. 20. Tubes polliniques en germination. - En I, noyau reproducteur seul ; en II, noyau végétatif seul (Townsend)
Fig. 21 Positions du noyau : I. Dans le développement des papilles de la cloison des cellules épidermiques d'Aloe verrucosa. II. Pendant l'épaississement de la membrane épidermique des graines de scopolina atropoiles (Haberlandt)
Fig. 22. Développement des poils radicaux du Pisum sativum : Position du noyau dans les cellules (Haberlandt) / Fig. 23. Formation d'une calotte localisée avec juxtaposition du noyau, dans une cellule de Myoporum acuminalum (J. Briquet)
0062 - Page 62 - Chapitre IV. Pores et ponctuations
Fig. 24. Cyclotella socialis : colonie avec ses liaisons protoplasmiques (Schutt)
Fig. 25. Cellules épidermiques de Lilium Martagon (Gardiner) / Fig. 26. Epiderme de Cucurbita Pepo. Ponctuations sensibles. - I. Epiderme examiné à plat. - II. Coupe transversale, a petit cristal (Haberlandt)
0066 - Page 66 - Ponctuations intercellulaires
Fig. 27. Pores tapissés par la couche tertiaire (d'après Dippel)
Fig. 28. Fragment de paroi cellulaire de la moelle d'une tige assez âgée de Climatisvitalba
0068 - Page 68 - Origine et développement
Fig. 29. Marattia Brongniartii. Cellule de l'écorce du pétiole montrant le contenu cellulaire rétracté et les plasmodesmes agrégés etisolés traversant la membrane (Poirault)
0070 - Page 70 - Rôles physiologiques des plasmodesmes / Transmission des sensations
0071 - Page 71 - Transport des matériaux nutritifs
0072 - Page 72 - Les plasmodesmes conducteurs des ferments
Fig. 30. Viscum album. Un fragment de paroi entre deux cellules du parenchyme cortical d'une tige âgée
Fig. 31. Pinus sylvestris : Divers stades de la formation du cal (Strasburger)
0074 - Page 74 - Conséquences de l'existence des plasmodesmes
0075 - Page 75 - La membrane est-elle réellement perforée?
0080 - Page 80 - Chapitre V. Striation de la membrane / I. Striation proprement dite
Fig. 32. Striation (cannelures internes) d'un vaisseau d'une branche de Pinus sylvestris vu de face (Correns)
Fig. 33. Striation de la membrane dans une partie élargie d'une fibre libébérienne de Vinca minor. - I. La membrane imbibée d'eau. - II. La membrane désséchée et incluse dans l'alcool absolu (Correns)
Fig. 34. Coupe transversale d'une fibre libérienne de Nerium montrant la direction des stries (Correns)
0088 - Page 88 - II. «Lamellation» transversale
Fig. 35. Lamellation transversale. - I. Fibre libérienne de Nerium, vue de face. - II. Membrane d'une fibre libérienne de Vinca minor, en coupe longitudinale. - III. Membrane d'une fibre libérienne de Cynanchum Vincetoxicum, en coupe longitudinale
0090 - Page 90 - III. Lignes de déplacement
Fig. 36. Lignes de déplacement des fibres libériennes de Nerium (Correns)
0093 - Page 93 - Chapitre VI. Les théories sur la constitution et le développement de la membrane. I. Formation de la membrane
Fig. 37. Cuphea Zimapani. Epiderme du tégument de la graine mûre. Deux stades de la formation du tube intracellulaire (Strasburger)
0098 - Page 98 - Membrane du grain de pollen
0099 - Page 99 - II. L'accroissement de la membrane. Théorie de l'apposition / La turgescence
Fig. 38. Membrane épaissie d'un rhizoïde de Chara foetida (Zacharias)
0108 - Page 108 - Théorie de l'intussusception
Fig. 39. Croissance anormale de la pointe d'un filament de champignon dont le développement est arrêté (Reinhardt)
0111 - Page 111 - Travaux de Strasburger
Fig. 40. Membrane du grain de pollen mûr de Knautia magnifica avec l'intine et l'exine complètement développées (Strasburger) / Fig. 41. Un des pores du grain de pollen de Knautia magnifica fortement grossi (Strasburger)
Fig. 42. Membrane du grain de pollen de Knautia magnifica
0119 - Page 119 - Deuxième partie. Constitution chimique de la membrane. Chapitre premier. Généralités sur la constitution chimique de la membrane. A. Phanérogames et Cryptogames vasculaires. Constitution de la jeune membrane. Processus chimique de son développement
0121 - Page 121 - Membranes des cellules mères et des grains de pollen
0122 - Page 122 - B. Mousses / C. Algues
0123 - Page 123 - D. Champignons / Mucorinées
0124 - Page 124 - Péronosporées / Urédinées, Ustilaginées / Ascomycètes
0127 - Page 127 - Chapitre II. Substances fondamentales de la membrane. I. Cellulose et ses homologues
0129 - Page 129 - Cellulose proprement dite
0130 - Page 130 - Cristallisation de la cellulose dans la cellule
Fig. 43. Astrapea Wallichii. Cellules parenchymateuses avec sphéro-cristaux de cellulose (Gilson)
0132 - Page 132 - Réactions colorantes de la cellulose
0134 - Page 134 - Matières colorantes organiques / Technique. Réactifs iodés
0135 - Page 135 - Chlorure de calcium iodé (Mangin. Form. de Zimmermann (21, 138) / Acide iodhydrique iodé fumant de Mangin. Procédé de choix / Matières colorantes artificielles (Mangin). Couleurs tétrazoïques en bain alcalin
0136 - Page 136 - Tunicine ou cellulose animale / Hydrates de carbone de réserve
Fig. 44. Tropeolum majus. Cellules des cotylédons
0141 - Page 141 - Lichenine / Bibliographie
0144 - Page 144 - II. Composés pectiques / Les divers composés pectiques. Leurs caractères chimiques
0146 - Page 146 - Acide pectique / Acide métapectique ou arabique
0147 - Page 147 - Répartition des composés pectiques chez les végétaux / Leur localisation dans la paroi cellulaire. a) La membrane propre de la cellule
0150 - Page 150 - Dissolution de la lamelle moyenne. - Dissociation des tissus
0152 - Page 152 - La vraie nature de la lamelle moyenne
0153 - Page 153 - Les méats intercellulaires
0155 - Page 155 - Réactions colorantes des composés pectiques. A. Matières colorantes artificielles
0157 - Page 157 - Réactifs minéraux. Rouge de ruthénium / Combinaisons salines
0160 - Page 160 - Elimination de la cellulose des tissus / Elimination des composés pectiques
0161 - Page 161 - Emploi des réactifs colorants. a) Matières colorantes artificielles
0162 - Page 162 - b) Réactifs minéraux. Rouge de ruthénium [Mangin]. (Réactif de choix) / Colorants salins (Petit) / Double coloration de la cellulose et des composés pectiques (Mangin)
0166 - Page 166 - Réactions colorantes de la callose
0170 - Page 170 - Chapitre III. Substances incrustantes de la membrane. Ier. Lignine / Répartition de la lignine chez les végétaux
0173 - Page 173 - Localisation de la lignine dans la paroi cellulaire
0174 - Page 174 - Epoque de l'apparition de la lignine
0175 - Page 175 - Constitution chimique de la membrane lignifiée. a) Substances fondamentales de la membrane lignifiée
0176 - Page 176 - b) Principe lignifiant
0182 - Page 182 - c) Substances accessoires de la membrane lignifiée
0184 - Page 184 - Réaction des membranes lignifiées
0189 - Page 189 - Technique / Phloroglucine chlorhydrique / Sulfate d'aniline / Réactif de Maule / Fuchsine ammoniacale (Van Thiegem) / Carmino-Vert. Formule et procédé Mirande. 1. Préparation du réactif
0194 - Page 194 - II. Subérine / Répartition de la subérine
0195 - Page 195 - Constitution de la membrane subérifiée
0196 - Page 196 - Composition chimique et caractères de la subérine
0197 - Page 197 - Réactions de la subérine
0198 - Page 198 - Technique. Réaction de Höhnel / Réaction de Gilson / Teinture d'Alkanna. (Formule de Guignard) / Triple coloration (Petit)
0199 - Page 199 - III. Cutine / Constitution et caractères chimiques
0200 - Page 200 - IV. Cire / Constitution et caractères chimiques
0201 - Page 201 - Structure du revêtement cireux
0202 - Page 202 - V. Autres substances incrustantes de la Membrane. Sphagnol / Tanins / Matières colorantes
0204 - Page 204 - Matières minérales / Emploi du vert d'anthracène en poudre (Mangin)
0207 - Page 207 - Troisième partie. Dégénérescence de la membrane
0214 - Page 214 - Classification des mucilages
0215 - Page 215 - Technique. a) Coloration du mucilage / b) Gonflement et dissolution consécutive du mucilage
0216 - Page 216 - IV. Résine / V. Essences
0217 - Page 217 - VI. Fermentation de la membrane
0221 - Page 221 - Quatrième partie. Fonctions de la membrane
0227 - Page 227 - Résumé et conclusions / I. Morphologie générale
0228 - Page 228 - II. Constitution chimique
0229 - Page 229 - III. Dégénérescence de la membrane / IV. Fonctions de la membrane